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分离外泌体的方法之微流控分离：基于微流体的外泌体分离可以包括用于外泌体捕获的免疫亲和方法，纳米多孔膜筛分方法或微柱上的纳米线用于外泌体捕获。所有三个系统都需要具有粘弹性分析和电操作的芯片才能进行外泌体分离过程。外泌体的特异性很高，采用基于微流控芯片的免疫亲和捕获方法。尺寸范围在40-100nm之间的外泌体被这种微流体芯片特异性地捕获，在外泌体分离和定量方面的益处。筛分方法可用于通过压力或通过电泳从全血中过滤外泌体，压力的利用使分离时间更短，电场导致高外泌体纯度。特异性、可重复性、低分离时间和更低的分离成本是基于微流体的外泌体分离的一些优点。蛋白质分离方法可以用于外泌体的分离和纯化。521永久性地址秘密入口 长沙组织提取外泌体企业

外泌体分离方法之沉淀分离方法：：基于聚合物的沉淀分离方法是利用超亲水聚合物来增强小尺寸颗粒（如外泌体）的沉淀。聚乙二醇的常用浓度在8%到15%之间变化。使用这种方法，将含有外泌体的溶液与聚合物一起孵育过夜，并在约10,000×g下进一步离心。外泌体分离方法之FFF分离法：FFF目前是一种很少使用但前景不错的一种外泌体分离方法。分离由横流力驱动，并基于颗粒的分子量或流体动力学直径。它包括高纯度、高效率和短时间处理，但迄今为止，FFF在外泌体分离中的使用案例较少，还有待进一步开发。521永久性地址秘密入口 长沙组织提取外泌体企业外泌体被发现在各种生物体中，包括哺乳动物、植物和微生物。

在生物流体中发现的细胞外囊泡包括来自内体，多泡体的细胞外泌体（30nm至150nm）和来自质膜的微泡（150nm至1000nm）。目前已知有多种从生物体液中分离外泌体的方法除了使用高速离心机的离心分离法以外，还有色谱法、超滤过滤法、基于聚合物的沉淀和免疫分离法等。#外泌体干细胞#这些细胞外泌体分离方法提取的外泌体要警惕非外泌体颗粒污染，如凋亡小体、凋亡小囊泡、外泌体和脂蛋白，均会对获得的外泌体生物活性产生影响。另外，分离方法也会影响细胞外泌体的纯度和产量。如果要从培养基中分离外泌体，就要使用无血清培养基或无外泌体胎牛血清。

外泌体分离方法之基于聚合物的沉淀法：基于聚合物的沉淀技术通常包括将生物流体与含聚合物的沉淀溶液混合、4℃孵育和低速离心。用于基于聚合物的沉淀的较常见聚合物之一是聚乙二醇(PEG)。这种聚合物的沉淀可以对分离的外泌体产生温和影响而且可以产生中性的pH值。由此，出现了几种常见的外泌体试剂盒：比如：SystemBiosciences,MountainView,CA,ExoQuick等。研究表明，使用ExoQuick方法可以快速执行，无需额外设备，只需用高速离心机进行超速离心可以获得高产量的外泌体。但是此方法的缺点是：非外泌体材料对外泌体分离物的污染仍然是基于聚合物的分离方法的一个问题。此外，分离物中的聚合物可能会干扰下游分析。外泌体分离的过程需要进行多次洗涤和离心。

CHO细胞外泌体的分离和表征：CHO细胞是一种普遍用于生物制药蛋白质生产的宿主。CHO细胞中分离外泌体主要采用聚合物的沉淀(PBP)技术从分批培养中分离和富集细胞外泌体囊泡。分离后的外泌体可以通过多种方法来检测和表征分离的囊泡，这些分析包括动态光散射(DLS)和Zeta电位测量、电子显微镜(EM)和外泌体标记物分析、RNA和脂质分析等。根据制造商的指南，使用TEI总外泌体分离试剂盒（Invitrogen）从培养基中分离外泌体。将细胞培养基以2000×g离心30分钟以去除细胞和任何碎片；随后将上清液小心移至离心管管中，加入0.5倍体积的TEI试剂，充分混合并在4°C下孵育过夜。然后将样品在4°C下以10,000×g离心1小时，然后在弃去上清液后，将富含外泌体的颗粒重新悬浮在75μlPBS缓冲液中。然后将样品储存在-20°C下，直到需要进行后续分析。外泌体介导的RNA转移对基因表达水平和遗传数据传递具有重要的调节作用。521永久性地址秘密入口 长沙组织提取外泌体企业

外泌体的纯化可以通过单颗粒色谱等技术实现。521永久性地址秘密入口 长沙组织提取外泌体企业

分离外泌体的方法之免疫亲和相互作用：免疫亲和法是利用外泌体表面蛋白（抗原）与其靶抗体或分离配体分子之间的免疫亲和相互作用原理分离纯外泌体的理想方法。它有助于根据其表面标志物分离特定类型的外泌体。基于微孔板的酶联免疫吸附测定（ELISA）是免疫亲和分离试剂盒的一个例子，用于根据外泌体表面标志物分离外泌体。Tetraspanin蛋白是这种分离方法的决定因素。抗CD9、抗CD63和抗CD81是免疫亲和外泌体分离中使用的抗体的常见示例。免疫亲和法可用于从结肠病细胞中分离外泌体，其效率高于超速离心和密度梯度分离。另外还有一种外泌体分离方法，该方法采用抗体包被的基于磁性颗粒的技术来分离外泌体。521永久性地址秘密入口 长沙组织提取外泌体企业

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